Incucyte^® 렌티바이러스 역가 분석을 위한 최적의 피펫팅 방법

세포 기반 분석의 재현성을 향상시키려면 시료 준비 과정에서 세심한 주의를 기울여야 합니다. 각 단계에 맞춰 피펫팅 방식을 조정하는 것이 중요합니다 (예: 세포 배양액을 제거할 때 흡입 속도를 낮추면 세포가 용기에서 떨어져 나가는 것을 방지할 수 있습니다).

이 응용 노트에서는 렌티바이러스 역가 측정 프로토콜을 예로 들어 각 단계에서 정확한 피펫팅 기술이 얼마나 중요한지 설명합니다. 시료 온도가 피펫팅 결과에 미치는 영향과 소량 시료를 피펫팅할 때의 권장 사항을 알아보세요.

자주 묻는 질문

• How are bubbles prevented in cell culture?
  • 역방향 피펫팅 기법 또는 다중 분주 모드를 사용하면 기포 발생을 방지할 수 있습니다. 정방향 피펫팅 기법을 사용할 때 정확한 피펫팅을 위해 필요한 블로우아웃 과정에서 기포가 자주 발생합니다. 역방향 피펫팅 및 다중 분주 모드는 분주 후 팁 내부에 남아 있는 과도한 용액을 흡입하여 제거하므로 기포가 생성되지 않습니다.
• How can adherent cell detachment be avoided while changing culture media?
  • 액체의 유속을 늦추는 것이 도움이 됩니다. 전자 피펫을 사용하여 배양액을 제거할 때는 속도를 느리게 설정하고 최대 용량이 더 작은 피펫을 선택하십시오.
• How to reduce shear stress to cells during pipetting?
  • 액체 유속을 느리게 하고, 피펫 팁의 구멍이 넓은 것을 사용하십시오.
• How much extra volume should be prepared when dispensing reagent from a reagent vessel or reservoir using multi-dispensing mode with a multichannel electronic pipette?
  • 다채널 피펫의 팁에 공기가 흡입되는 것을 방지하기 위해 용액량을 30% 더 준비하십시오. 흡입하기 전에 팁이 액체 표면 아래에 있는지 확인하십시오. 10µL 또는 120µL 다채널 피펫의 경우 팁이 액체 표면에서 1~3mm 아래에 있으면 충분합니다. 1,200µL와 같은 더 큰 용량의 경우 팁이 표면에서 3~5mm 아래에 있어야 합니다. 깊이는 전체 저장 용기의 크기에 따라 달라집니다.
• How to speed up sample preparation of cell-based assays?
  • 마스터 플레이트를 제작하면 96웰 또는 384웰 플레이트에 다양한 시약(또는 다양한 농도의 시약)을 빠르게 첨가할 수 있는 반면, 시약 저장소는 한 종류의 용액만 분주하는 데 사용할 수 있습니다. 시약 마스터 플레이트는 다중웰 플레이트에 준비하여 다중채널 피펫을 사용하여 분석 플레이트에 쉽게 분주할 수 있도록 합니다. 96웰 형식의 마스터 플레이트에는 각 웰에 최소 10%의 과량 시약을 포함해야 합니다.

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