혼합 림프구 반응(MLR)

면역 체크포인트는 T세포의 ‘켜짐/꺼짐 스위치’ 역할을 하는 조절 신호입니다. 체크포인트는 T세포가 종양 세포나 수지상 세포(DC)와 같은 항원 제시 세포(APC)에 결합할 때 활성화됩니다. 체크포인트 억제제라고 불리는 면역 치료제는 T세포와 APC 사이의 이러한 시냅스를 표적으로 삼아, 특히 T세포를 ‘끄는’ 역할을 하는 면역 체크포인트를 차단하도록 개발되었습니다. 이는 T세포 활성화를 촉진하고 항종양 반응을 증가시킵니다. 현재 암 치료에 승인된 체크포인트 억제제에는 항PD-1, 항PD-L1 및 항CTLA4 단클론 항체가 있으며, 더 많은 치료제가 활발히 개발 중입니다.

MLR(혼합 림프구 반응)은 두 사람의 면역 세포를 함께 배양하여 면역 체크포인트 조절에 필요한 ‘비자기’ 인식 반응을 유도하는 검사법입니다. 이 검사법은 치료제의 T 세포 반응 증강 능력을 평가함으로써 잠재적인 치료제를 연구하는 데 사용될 수 있습니다. MLR에서 T 세포 반응을 측정하는 기존 기법은 다음과 같은 특징을 가집니다.

  • 사이토카인(예: ELISA), 세포 증식 및 마커 발현(예: 기존 유세포 분석법)에 대해 각각 별도의 분석법이 필요합니다.
  • 대량의 시료가 필요한 저처리량 데이터 수집 장비를 사용하십시오.
  • 플레이트 리더 및 ELISA 등 여러 소스에서 수집된 데이터를 수동으로 분석해야 합니다.
  • 이 방법들은 프로토콜 최적화, 고정 및 반복적인 세척과 같은 단계를 필요로 하기 때문에 힘들고 시간이 많이 소요됩니다.

Here we demonstrate a simple, robust workflow for measuring T cell response in MLR using the iQue® 고처리량 스크리닝(HTS) 유세포 분석기 and associated suite of validated reagents. The user can choose to combine one or more iQue® kits, including the iQue® Human T Cell Activation Kit and iQue Qbeads® 인체 염증 패널 키트, to generate a range of outputs as desired. Enhance your screening and profiling studies by combining the power of the iQue® and the 자동화된 통합 분석 for instantaneous pharmacological readouts for the effects of novel immunotherapies on T cell response

 

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애플리케이션

분석 개념

그림 1. 혼합 림프구 반응(MLR) 분석 원리 모식도

단방향 혼합 림프구 반응(MLR)에서는 한 공여자로부터 분리한 CD4+ T 세포를 다른 공여자로부터 분리한 수지상 세포(DC)와 혼합하여 T 세포를 한 방향으로 활성화시킵니다. 양방향 MLR은 서로 다른 두 공여자로부터 얻은 말초혈액 단핵세포(PBMC)를 함께 배양하여 두 공여자 모두로부터 유래한 T 세포를 양방향으로 활성화시키는 방법입니다. 두 가지 검사 방식 모두에서 T 세포 활성화는 DC에 있는 MHC 분자가 '비자가'로 인식되는 동종 반응에 의존합니다. 이는 공여자 간의 HLA 유전자형 차이에 기반합니다. 동종 MHC에 의한 T 세포 활성화 반응 유도는 면역관문 억제제, 예를 들어 항PD-1 및 항CTLA4 단클론 항체를 첨가함으로써 강화될 수 있습니다. iQue® 3 및 관련 키트(iQue® 인간 T 세포 활성화 키트, iQue Qbeads® 인간 염증 패널 키트, 맞춤형 iQue Qbeads® PlexScreen 키트 등)를 사용하여 단방향 또는 양방향 혼합 림프구 반응(MLR)에서 T 세포 반응을 분석할 수 있습니다. 이러한 키트는 사용자의 필요에 따라 단일 분석 플레이트에서 증식, 마커 발현 및 사이토카인 방출을 측정하기 위해 단독 또는 조합하여 사용할 수 있습니다.

주요 장점

  • - 단일 웰에서 다중 면역표현형 분석 및 효과기 사이토카인 농도 측정

  • - 약리학적 분석에 적합한 T 세포 반응 측정값을 생성합니다.

  • - 96웰 또는 384웰 플레이트에서 마커 및 사이토카인을 신속하게 정량화하여 스크리닝 및 프로파일링 연구를 용이하게 합니다.

  • 실시간 데이터 분석 및 혁신적인 시각화 도구를 활용하여 답변 시간을 단축하세요.

표면 마커 및 사이토카인 발현을 동시에 정량화합니다.

단일 웰에서 다중 면역표현형 분석 및 효과기 사이토카인 농도 측정


그림 2. 단일 웰에서 체크포인트 억제제 약물에 의해 유도된 사이토카인 방출 및 마커 발현 측정

수지상세포(DC)를 해동하고 IL-4, 그랜자임 B, LPS를 첨가하여 하룻밤 동안 활성화시킨 후 96웰 플레이트에 웰당 40,000개씩 분주했습니다. B/Green 인코딩 염료로 표지된 CD4+ T 세포를 DC 대비 3:1 비율로 첨가했습니다. T 세포 활성화를 촉진하기 위해 다양한 농도의 면역관문 억제제인 펨브롤리주맙(항-PD-1 단클론항체)을 첨가했습니다. 사이토카인 샘플은 2일차와 6일차에 분석했습니다. 마커 발현은 분석 종료 시점(6일차)에 분석했습니다. iQue® 인간 T 세포 활성화 키트와 iQue® 3 HTS 플랫폼을 사용하여 IFNγ 분비, TNFα 분비 및 CD25 발현을 분석했습니다.

정량적 데이터를 얻으세요

약리학적 분석에 적합한 T 세포 반응 측정값을 생성합니다.


그림 3. iQue Forecyt®를 이용한 자동 EC 계산으로 약물 유도 T 세포 반응 정량화

DC 세포(웰당 40,000개)에 CD4+ T 세포(T 세포 대 DC 비율 3:1)를 접종하고 펨브롤리주맙으로 처리했습니다. 2일차와 6일차에 10 µL 샘플을 iQue Qbeads® Human Inflammation Panel Kit를 사용하여 분석했습니다. 히트맵은 웰당 IL-2(pg/mL) 방출량을 보여줍니다. 대조군 웰에는 약물이 없는 T 세포와 DC 세포가 포함되었습니다. 곡선은 시간 경과 및 펨브롤리주맙 농도에 따른 염증성 사이토카인의 방출을 나타냅니다. 2일차에 펨브롤리주맙에 대한 IL-2 방출의 EC 값은 0.53 µg/mL였으며, 6일차에는 모든 IL-2 생성이 중단되었습니다. IL-6, CCL2 및 CCL3 수치는 모두 2일차에서 6일차로 증가했으며, 6일차의 CCL2 및 CCL3 방출에 대한 EC 값은 각각 0.98 µg/mL 및 1.0 µg/mL로 매우 유사했습니다.

고처리량 분석을 수행합니다.

96웰 또는 384웰 플레이트에서 마커 및 사이토카인을 신속하게 정량화하여 스크리닝 및 프로파일링 연구를 용이하게 합니다.


그림 4. 384웰 분석 형식을 사용하여 여러 PBMC 공여자 쌍에 걸쳐 체크포인트 억제제가 사이토카인 방출에 미치는 영향을 신속하게 분석합니다. 

여러 공여자로부터 얻은 PBMC(80,000개/웰)를 단독(단일 공여자 대조군) 또는 조합(총 8쌍의 공여자)으로 배양했습니다. 세포에 다양한 농도의 항-CTLA4 면역관문 억제제 항체를 처리했습니다. PHA와 MMC를 혼합한 PBMC를 각각 양성 및 음성 대조군으로 사용했습니다. 3일 후, IFNγ iQue Qbeads®를 사용하여 사이토카인 농도를 분석하고 표준 곡선을 이용하여 농도를 계산했습니다. 히트맵은 PBMC 공여자 쌍 간의 항-CTLA4 유도 IFNγ 방출량 차이를 보여줍니다. 막대 그래프는 혼합 PBMC가 단일 공여자 대조군보다 지속적으로 더 많은 IFNγ를 방출함을 보여줍니다. 이는 17 ng/mL의 항-CTLA4를 첨가했을 때 더욱 증가했습니다. 공여자 쌍 7의 항-CTLA4(EC = 6.5 ng/mL)에 대한 반응을 보여주는 대표적인 농도 반응 곡선입니다.

생산성을 극대화하세요

실시간 데이터 분석 및 혁신적인 시각화 도구를 활용하여 답변 시간을 단축하세요.


그림 5. iQue Forecyt®를 이용한 사전 설정 게이팅 및 자동 데이터 분석은 T 세포 활성화에 대한 즉각적인 판독값을 제공합니다. 

서로 다른 두 명의 공여자로부터 얻은 CD4+ T 세포를 한 명의 공여자로부터 얻은 수지상 세포(DC)와 다양한 T:DC 비율로 각각 공동 배양했습니다. 각 T 세포 공여자는 DC 공여자의 HLA 대립유전자와 서로 다른 정도의 불일치를 보였습니다. 공여자 1의 T 세포는 DC 공여자의 HLA 프로필과 더 유사했으며, 8개의 대립유전자 중 3개(HLA-A, -B, -C, -DR 각각 2개씩)만 불일치한 반면, 공여자 2의 T 세포는 8개의 대립유전자 중 7개가 불일치했습니다. 대조군으로는 T 세포를 단독으로 배양한 경우(음성)와 Dynabeads 또는 Immunocult와 함께 배양한 경우(양성)를 사용했습니다. 분석은 iQue® Human T Cell Activation Kit를 사용하여 수행했습니다. 플레이트 이미지는 CD4+ 세포 집단 내 CD25 발현의 차이를 웰별로 보여줍니다. T 세포 활성화는 T:DC 비율이 감소함에 따라 증가하며, 공여자 2의 T 세포에서 더 크게 나타났습니다. 이는 HLA 대립유전자 불일치가 '비자기' 세포 인식을 촉진하기 때문에 예상되는 결과입니다. 등고선 도표는 기증자 1과 기증자 2(T:DC 비율 3:1)의 CD25 양성 T 세포 비율을 보여줍니다. 막대 그래프는 CD4+ 세포 집단에서 CD25 양성 세포의 비율을 정량화한 것입니다.

MLR 분석 워크플로우

그림 6. iQue® 3 HTS 플랫폼에서 단방향 및 양방향 MLR 분석 프로토콜

다양한 세포 및 비드 기반 키트 중에서 선택하여 사용자 요구에 따라 분석 매개변수를 정의할 수 있습니다. 이 분석법은 iQue® 인간 T 세포 활성화 키트, iQue Qbeads® 인간 염증 패널 키트 및 맞춤형 iQue Qbeads® PlexScreen 키트를 사용하여 검증되었습니다.

주문 정보

iQue® 인간 T세포 활성화 키트
플랫폼: iQue® 3/ iQue® Screener Plus - VBR 구성과 호환 가능
사용 가능한 사이즈카탈로그 번호
1 x 96웰90560
1 x 384개 우물90562
iQue Qbeads® 인체 염증 패널 키트
플랫폼: iQue® 3/ iQue® Screener Plus와 호환 가능 - BR 및 VBR 구성 지원
사용 가능한 사이즈카탈로그 번호
1 x 384개 우물97097
iQue Qbeads® PlexScreen: 인간 분비 단백질 
사이토카인 
케모카인TNF인터루킨
CCL2(MCP-1)TNF(TNFα)IL-1αIL-10
CCL3(MIP-1α)sCD154 (sCD40 리간드)IL-1βIL-11
CCL5 (RANTES)CD178(Fas 리간드)IL-2IL-12/IL-23(p40)
CCL11(에오탁신)TNFβ (LT-α/TNFSF1)IL-3IL-12(p70)
CD14 IL-4IL-13
CXCL9(MIG) IL-5IL-17A
CXCL10 (IP-10) IL-6IL-17F
CXCL11 (I-TAC) IL-7IL-21
CX3CL1 (프랙탈카인) IL-8IFN-α
  IL-9IFN-γ
수용체접착 분자성장 인자효소
CD121a (IL-1 RI)CD54(ICAM-1)안지오제닌그란자임 A
CD121b (IL-1 RII)CD62E(E-셀렉틴)기본 FGF그란자임 B
티프리CD62L(L-셀렉틴)CSF2(GM-CSF) 
TNFRIICD62P(P-셀렉틴)CSF3(G-CSF) 
 CD106(VCAM-1)VEGF 

 

자료

문헌 및 자료

브로셔

세포 계측법을 통한 iQue 고처리량 스크리닝(HTS)

정말 빠릅니다. 간단하게 쉽게.

웹 세미나

온디맨드 웹 세미나: 면역관문 억제제 치료법 평가 (사용된 방법 포함)

제품 가이드

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T세포 활성화 세포 및 사이토카인 프로파일링 키트

제품 가이드

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인간 QBeads 염증 패널 키트

애플리케이션 노트

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혼합 림프구 반응(MLR)을 활용한 면역관문 억제제 치료법 평가

포스터

포스터: MLR 분석법을 이용한 면역관문 억제제 치료법 평가

iQue® 유세포 분석 플랫폼을 사용하여 96웰 또는 384웰 플레이트에서 MLR의 T 세포 반응을 정량화하는 분석법.