혼합 림프구 반응 (MLR)

면역 체크포인트는 T 세포의 '온/오프 스위치'로 작용할 수 있는 조절 신호입니다. 체크포인트는 T 세포가 종양 세포 또는 수지상 세포(DC)와 같은 항원 제시 세포(APC)에 결합할 때 작동합니다. 면역치료제인 체크포인트 억제제는 T 세포와 APC 사이의 이 시냅스를 표적으로 하여, 일반적으로 T 세포를 '차단'하는 면역 체크포인트를 특별히 억제하기 위해 개발되었습니다. 이는 T 세포 활성화 증가와 항종양 반응 증가로 이어집니다. 현재 암 치료에 승인된 체크포인트 억제제 요법에는 항-PD-1, 항-PD-L1 및 항-CTLA4 단클론 항체가 포함되며, 더 많은 요법이 활발히 개발 중입니다.

MLR은 두 개인의 면역 세포를 함께 배양하여 면역 체크포인트 조절에 필요한 '비자기' 인식을 유발하는 분석법입니다. 이 분석법은 T 세포 반응을 높이는 능력을 평가하여 잠재적 치료제를 조사하는 데 사용될 수 있습니다. MLR에서 T 세포 반응을 측정하는 기존 기술은 종종:

  • 사이토카인(예: ELISA)에 대한 별도의 분석, 증식 및 마커 발현(예: 기존 유세포 분석)을 요구함
  • 대량의 샘플 볼륨을 필요로 하는 저처리량 획득 장비 사용
  • 예를 들어 플레이트 리더와 ELISA와 같은 여러 소스에서 수집된 데이터의 수동 분석을 필요로 함
  • 프로토콜 최적화, 고정 및 반복적인 세척과 같은 단계를 요구하여 노동 집약적이고 시간이 많이 소요됩니다

여기서 우리는 iQue® 키트와 관련된 검증된 시약 모음을 사용하여 MLR에서 T 세포 반응을 측정하는 간단하고 강력한 워크플로우를 시연합니다. 사용자는 iQue® 인간 T 세포 활성화 키트 등 하나 이상의 iQue® 키트를 결합하여 원하는 다양한 출력을 생성할 수 있습니다. 새로운 면역 치료제가 T 세포 반응에 미치는 영향에 대한 즉각적인 약리학적 판독을 위해 iQue®의 힘과 결합하여 스크리닝 및 프로파일링 연구를 강화하세요


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애플리케이션

검정 개념

그림 1. 혼합 림프구 반응(MLR) 검정 원리 설명

일방향 MLR에서는 한 공여자의 분리된 CD4+ T 세포를 다른 공여자의 수지상 세포(DCs)와 결합하여 단방향 T 세포 활성화를 유도합니다. 양방향 MLR은 두 다른 공여자의 말초혈액단핵구(PBMCs)를 공동 배양하여 두 공여자의 T 세포가 양방향으로 활성화되는 결과를 낳습니다. 두 실험 설정 모두에서 T 세포 활성화는 수지상 세포의 MHC 분자를 '비자기'로 인식하는 동종 반응에 의존합니다. 이는 공여자들의 HLA 반형질의 차이에 기반합니다. 동종 MHC에 의한 T 세포 활성화 반응은 항-PD-1 및 항-CTLA4 단클론 항체와 같은 체크포인트 억제제 약물을 추가하여 향상될 수 있습니다. 일방향 또는 양방향 MLR의 T 세포 반응 분석은 iQue® 3 및 관련 키트들(iQue® 인간 T 세포 활성화 키트, iQue Qbeads® 인간 염증 패널 키트, 맞춤형 iQue Qbeads® PlexScreen 키트 포함)을 사용하여 수행할 수 있습니다. 이러한 키트들은 단일 분석 플레이트에서 사용자의 요구에 맞게 증식, 마커 발현 및 사이토카인 방출을 측정하기 위해 단독 또는 조합으로 사용될 수 있습니다.

주요 장점

  • - 다중 면역표현형 분석 및 단일 웰에서 읽은 효과 사이토카인 농도

  • - 약리학적 분석에 적합한 T 세포 반응 측정 생성

  • - 96 또는 384웰 플레이트에서 마커 및 사이토카인의 신속한 정량화를 통해 스크리닝 및 프로파일링 연구 촉진

  • - 실시간 데이터 분석 및 혁신적인 시각화 도구로 답변 시간 단축

표면 마커 및 사이토카인 발현을 동시에 정량화

다중 면역표현형 분석 및 단일 웰에서 읽은 효과 사이토카인 농도


그림 2. 단일 웰에서 체크포인트 억제제 약물로 유도된 사이토카인 방출 및 마커 발현 측정

수지상세포(DCs)를 IL-4, 과립효소 B, LPS와 함께 밤새 해동 및 활성화한 후 96웰 플레이트에 40,000개/웰로 플레이팅했습니다. B/Green 인코딩 염료로 표지된 CD4+ T 세포를 3:1 T 세포-대-DC 비율로 추가했습니다. T 세포 활성화를 촉진하기 위해 체크포인트 억제제 약물 페므롤리주맙(항-PD-1 단클론 항체)의 다양한 농도를 추가했습니다. 사이토카인 샘플은 2일과 6일에 분석했습니다. 마커 발현은 분석 종료 시점(6일)에 분석했습니다. 샘플은 iQue® 인간 T 세포 활성화 키트와 iQue® 3 HTS 플랫폼을 사용하여 IFNγ 방출, TNFα 방출 및 CD25 발현에 대해 분석했습니다.

정량적 데이터 획득

약리학적 분석에 적합한 T 세포 반응 측정 생성


그림 3. iQue Forecyt®를 통한 자동 EC50 계산으로 약물 유도 T 세포 반응 정량화

수지상 세포(DC)를 (40K/well)에 인코딩된 CD4+ T 세포(T 세포-DC 비율 3:1)와 함께 파종하고 펨브롤리주맙으로 처리했습니다. 10 µL 샘플을 2일과 6일에 iQue Qbeads® 인체 염증 패널 키트를 사용하여 분석했습니다. IL-2(pg/mL) 방출을 보여주는 히트맵. 대조군 웰에는 약물 없이 T 세포와 수지상 세포가 포함되었습니다. 곡선은 염증성 사이토카인의 시간적, 펨브롤리주맙 농도 의존적 방출을 강조합니다. 2일째, IL-2 방출에 대한 EC50는 0.53 µg/mL였으며, 6일째에는 모든 IL-2 생성이 중단되었습니다. IL-6, CCL2, CCL3 수준은 2일에서 6일 사이에 모두 증가했으며, 6일째 CCL2와 CCL3 방출의 EC50 값은 각각 0.98과 1.0 µg/mL로 매우 유사했습니다.

고처리량 분석 수행

96 또는 384웰 플레이트에서 마커 및 사이토카인의 신속한 정량을 통해 스크리닝 및 프로파일링 연구를 용이하게 합니다.


그림 4. 384웰 분석 형식을 사용하여 여러 PBMC 공여자 쌍에서 체크포인트 억제제로 유도된 사이토카인 방출 효과를 신속하게 프로파일링 

여러 공여자의 PBMCs(80K/well)를 단독(단일 공여자 대조군) 또는 조합(총 8개 공여자 쌍)으로 파종했습니다. 세포들은 여러 농도의 항-CTLA4 체크포인트 억제 항체로 처리되었습니다. PHA와 MMC가 포함된 혼합 PBMCs는 각각 양성 및 음성 대조군으로 사용되었습니다. 3일 후, 샘플들은 IFNγ iQue Qbeads®를 사용하여 사이토카인 농도를 분석하고 표준 곡선을 이용해 농도를 계산했습니다. 열 지도는 PBMC 공여자 쌍 간 항-CTLA4로 유도된 IFNγ 방출의 차이를 강조합니다. 막대 그래프는 혼합 PBMCs가 단일 공여자 대조군보다 일관되게 더 많은 IFNγ를 방출했음을 보여줍니다. 이는 17 ng/mL 항-CTLA4 추가로 더욱 증강되었습니다. 공여자 쌍 7의 항-CTLA4에 대한 대표적인 농도-반응 곡선(EC50 = 6.5 ng/mL)입니다.

생산성 극대화

실시간 데이터 분석 및 혁신적인 시각화 도구로 응답 시간 단축


그림 5. iQue Forecyt®의 사전 설정 게이팅 및 자동화된 데이터 분석은 T 세포 활성화에 대한 즉각적인 판독을 제공합니다. 

CD4+ T 세포를 두 명의 서로 다른 공여자로부터 단일 공여자의 수지상 세포(DC)와 다양한 T__PH_0__ 비율로 별도로 공동 배양했습니다. 각 T 세포 공여자는 DC 공여자의 HLA 대립유전자와 다른 정도의 불일치를 가졌습니다. 공여자 1 T 세포는 HLA 프로파일에서 DC 공여자와 더 유사하여 3/8 대립유전자만 불일치(HLA-A, -B, -C 및 -DR 대립유전자 2개)했지만, 공여자 2 T 세포는 7/8 대립유전자가 불일치했습니다. 대조군에는 단독 배양된 T 세포(음성) 또는 Dynabeads나 Immunocult(양성)와 함께 배양된 T 세포가 포함되었습니다. 분석은 iQue® 인간 T 세포 활성화 키트를 사용하여 수행되었습니다. 플레이트 보기는 CD4+ 집단 내 CD25 발현의 웰별 차이를 보여줍니다. T 세포 활성화는 T__PH_1__ 비율이 감소함에 따라 증가하며, 공여자 2 T 세포에서 더 크게 나타납니다. 이는 HLA 대립유전자의 높은 불일치가 '비자기' 세포의 인식을 촉진하기 때문으로 예상됩니다. 등고선 그래프는 공여자 1과 공여자 2의 CD25 양성 T 세포 비율(3:1 T__PH_2__ 비율)을 보여줍니다. 막대 그래프는 CD4+ 집단의 CD25 세포 비율을 정량화합니다.

MLR 분석 워크플로우

그림 6. iQue® 3 HTS 플랫폼에서의 단방향 및 양방향 MLR 분석 프로토콜

사용자 요구에 따라 분석 매개변수를 정의하기 위해 다양한 세포 및 비드 기반 키트에서 선택하십시오. 이 분석은 iQue® 인간 T 세포 활성화 키트, iQue Qbeads® 인간 염증 패널 키트 및 맞춤형 iQue Qbeads® PlexScreen 키트를 사용하여 검증되었습니다.

주문 정보

iQue® 인간 T 세포 활성화 키트
Platform: Compatible with iQue® 3/ iQue® Screener Plus - VBR Configuration
사용 가능한 크기카탈로그 번호
1 x 96 well90560
1 x 384 wells90562
iQue Qbeads 인체 염증 패널 키트
Platform: Compatible with iQue® 3/ iQue® Screener Plus – BR and VBR Configurations
사용 가능한 크기카탈로그 번호
1 x 384 wells97097
iQue Qbeads® PlexScreen: Human Secreted Proteins 
사이토카인 
케모카인TNF인터루킨
CCL2 (MCP-1)TNF (TNFα)IL-1αIL-10
CCL3 (MIP-1α)sCD154 (sCD40 Ligand)IL-1βIL-11
CCL5 (RANTES)CD178 (Fas Ligand)IL-2IL-12/IL-23(p40)
CCL11 (Eotaxin)TNFβ (LT-α/TNFSF1)IL-3IL-12(p70)
CD14 IL-4IL-13
CXCL9 (MIG) IL-5IL-17A
CXCL10 (IP-10) IL-6IL-17F
CXCL11 (I-TAC) IL-7IL-21
CX3CL1 (Fractalkine) IL-8IFN-α
  IL-9IFN-γ
수용체접착 분자성장 인자효소
CD121a (IL-1 RI)CD54 (ICAM-1)AngiogeninGranzyme A
CD121b (IL-1 RII)CD62E (E-Selectin)Basic FGFGranzyme B
TNFRICD62L (L-Selectin)CSF2 (GM-CSF) 
TNFRIICD62P (P-Selectin)CSF3 (G-CSF) 
 CD106 (VCAM-1)VEGF 

 

리소스

문헌 및 문서

웨비나

온디맨드 웨비나: 체크포인트 억제제 요법 평가에 대한...

제품 가이드

제품 가이드

T 세포 활성화 세포 및 사이토카인 프로파일링 키트

제품 가이드

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인간 QBeads 염증 패널 키트

애플리케이션 노트

애플리케이션 노트

혼합 림프구 반응(MLR)을 이용한 체크포인트 억제제 치료 평가

브로셔

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iQue 고처리량 스크리닝(HTS) 세포측정 플랫폼

포스터

포스터: MLR 분석을 사용한 체크포인트 억제제 치료법 평가

iQue® 사이토메트리 플랫폼을 사용하여 96 또는 384웰 플레이트에서 MLR의 T 세포 반응을 정량화하기 위한 분석

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